液基细胞制片法
液基细胞制片法也称为薄层液基细胞学检测技术，具有收集细胞量多、背景干净清晰、细胞分布均匀、染色效果良好等优点，避免在制片的过程中出现人为因素干扰，从而提高诊断的准确性（主要有模式及沉降式两种制片方法）。目前大部分医院都采用液基细胞制片技术。
（一）沉降式液基细胞学制片方法
（1）充分混匀振荡使标本中的细胞分布均一。
（2）去除血凝块，组织碎块和黏液（注：去除血凝块和组织碎块这一步非常关键，否则可能造成吸取管堵塞，可以利用纱布之类的东西过滤标本。勿丢弃血凝块可留作细胞块包埋）。
（3）放入离心机，600 g的转速离心10分钟。
（4）倒去上清液，保留下层细胞沉积物。
（5）加入30 mL CytoRichTM红色固定液。
（6）振荡后静置30分钟。
（7）放入离心机，600 g的转速离心10分钟，倒掉上清液并充分振荡。
（8）如果看不到明显的细胞块，加入10 mL缓冲液，振荡后全部转移至12 mL离心管内。
（9）如果看见有明显的细胞块，吸取1～5滴转移至12 mL离心管内（细胞太多易重叠，需稀释），加入10 mL缓冲液。
（10）放入离心机，600 g的转速离心5分钟，倒去上清液并充分振荡。(https://www.daowen.com)
（11）在玻片架上与离心管对应的位置放上玻片，检查试剂瓶内试剂剩余量，将吸液管与对应的试剂瓶正确连接，运行制片程序。
（12）制片结束后移去玻片上的沉降室，迅速将玻片转移至无水乙醇里，随后放入二甲苯进行透明，封片（注：沉降室移去后，玻片应及时放入无水乙醇内，不能暴露在空气中，影响制片效果。染色结束后，应及时封片，以免在乙醇中浸泡过久造成褪色）。
（二）模式液基制片方法
（1）将标本放入30 mL清洗液中涮洗（若所取标本含血较多，可加入含10%冰醋酸的消化液20～30 mL），1 500～2 000 r/min振荡10分钟。
（2）离心：1 500～2 000 r/min离心5～10分钟，弃去上清液，观察细胞层，若肉眼仍可见血或黏液则重复步骤（1）。
（3）弃去上清液后将沉淀倒入盛有细胞保存液的标本瓶中。
（4）将标本瓶静置15分钟后，根据程序要求进行制片。
（三）对于特殊标本的处理
（1）含血液较多的标本处理流程（标本主要为穿刺标本、血性胸腔积液）：① 标本中加入含10%冰醋酸的清洗液（或LCT红色固定液），振荡5分钟；② 离心机中离心（2 000 r/min）；③ 取出标本后观察。如仍含血较多，去除上清液后，重复上述步骤。
（2）含黏液较多的标本处理流程（标本主要为痰液、灌洗液）：① 标本中加入消化液（每15 mL 1～2滴），振荡15～20分钟；② 纱布过滤后，放入离心机中离心（2 000 r/min）；③ 去除上清液后加入固定液。
（3）标本处理过程中，如果有血凝块勿丢弃，可以将血凝块直接包埋制作细胞块。