黄鼬干粉胶囊对再生障碍性贫血模型小鼠造血功能的影响

黄鼬干粉胶囊对再生障碍性贫血模型小鼠造血功能的影响

摘要

【目的】观察黄鼬干粉胶囊对再生障碍性贫血(AA)模型小鼠造血功能的影响及作用机制。【方法】采用X射线+环磷酰胺+氯霉素复合方法复制小鼠AA模型,观察黄鼬干粉胶囊对小鼠外周血象、骨髓有核细胞数(BMNC)、骨髓粒细胞-巨噬细胞集落生成单位(CFU-GM)、血清中可溶性细胞间黏附因子1(sICAM-1)和骨髓组织病理学的影响。【结果】黄鼬干粉胶囊能明显增加模型小鼠外周血中HGB、RBC、WBC和PLT数量,能增加骨髓BMNC数量,还能升高骨髓CFU-GM和降低血清sICAM-1。与模型对照组比较,差异有统计学意义(P<0.05)。骨髓组织病理学结果表明,黄鼬干粉能明显改善模型小鼠骨髓增生低下和造血灶减少,促进骨髓造血。【结论】黄鼬干粉胶囊能改善AA模型小鼠造血功能,其作用机制可能与调节骨髓CFU-GM和血清sICAM-1的平衡有关。

黄鼬(学名Mustelasibirica),俗名黄鼠狼,为鼬科小型杂食动物[1]。黄鼬肉骨在中国民间历来被视为一种药材,认为具有抗癌、增强免疫力等功效,对急性白血病(AL)、再生障碍性贫血(AA)、免疫性血小板减少症等疾病也有一定疗效。甘肃陇东地区民间常以黄鼬干粉用于AA及AL化疗后骨髓抑制患者,也用以治疗骨髓增生低下性疾病,效果满意。本实验拟观察黄鼬干粉胶囊对AA模型小鼠骨髓造血功能的影响。

1.材料与方法

1.1实验动物

昆明小鼠,SPF级,雌雄各半,体质量18~22g,由中国农业科学院兰州兽医研究所实验动物场提供,实验生产许可证号:SCXK(甘)2010-0001,动物实验合格证号:0000981。

1.2药物和试剂

黄鼬干粉胶囊(甘肃省庆阳市中医医院提供,批号:130706),临用前将药粉用8倍量蒸馏水浸泡2h,水浴锅煎煮30min,800rpm离心5min,取上清液,80℃浓缩至30%和90%的浓度,4℃冰箱保存备用;司坦唑醇片(广西南宁百会药业集团有限公司生产,批号:130416);注射用环磷酰胺(CTX)(山西普德药业股份有限公司生产,批号:04120103);氯霉素注射液(山东鲁抗辰欣药业有限公司生产,批号:130523);注射用青霉素钠(华北制药股份有限公司生产,国药准字H13020657);注射用硫酸链霉素(华北制药股份有限公司生产,批号:20130615);M199培养基(上海源叶生物科技有限公司生产,批号:130811);马血清(郑州益康生物有限公司生产,批号:130608);琼脂粉(青岛高科园海博生物技术有限公司生产,批号:20130406);ELISA(sICAM-1)试剂盒(产品型号E12789,规格96T,上海华壹生物有限公司生产,批号:20130522)。

1.3实验仪器

医用直线加速器(型号BD-6M,北京医疗器械研究所提供);低温高速离心机[Biofugefresco(美国)];血细胞分析仪[CD1200(美国)提供];奥林帕斯生物显微镜[Olympus公司(日本)生产];BS110S型sartorius电子天平(北京赛多利斯天平有限公司提供)。

1.4实验方法

1.4.1对AA模型小鼠外周血象、骨髓有核细胞数(BMNC)和骨髓组织病理学的影响[2-4]

1.4.1.1分组、造模、给药

取小鼠50只,随机分为5组,每组10只。除正常对照组外,其余各组采用医用直线加速器X射线一次性全身照射(皮源距100cm,辐射剂量为8.0Gy/min,辐射时间为4min),分别于第4天、5天、6天腹腔注射环磷酰胺50.0mg/kg及氯霉素62.5mg/kg,连续3d。造模的同时,正常对照组和模型对照组灌胃生理盐水,阳性对照组灌胃司坦唑醇片1mg/kg(相当于人体临床日用量的10倍),黄鼬干粉胶囊高、低剂量组分别灌胃黄鼬干粉胶囊煎液18g/kg和6g/kg(相当于临床人1日用量的30倍和10倍)。均为0.02mL/g,各组每天1次,连续15d。

1.4.1.2外周血象及BMNC计数

末次给药后次日,摘眼球取血,用血细胞分析仪测定外周血象变化。随后各组小鼠脱颈椎处死,分离出两侧股骨。取右侧股骨中段7mm,用3%冰醋酸溶液10mL冲出全部骨髓,并经6号针头抽吸一次,分散骨髓细胞。然后通过血细胞计数板在显微镜下计数骨髓有核细胞数(BMNC)。

1.4.1.3骨髓切片制备与观察

将左侧股骨浸入4%中性甲醛内固定2h,再用2%的硝酸脱钙2h,水洗2次,室温下乙醇梯度脱水各2次,然后用甲液、乙液顺序浸透各12h,用包埋液封闭,放入-20℃冰箱内过夜,第2天进行切片,苏木素-姬姆萨-伊红染色,最后置于光学显微镜下观察骨髓增生程度及造血细胞变化。

1.4.2对AA模型小鼠粒-巨噬细胞集落生成单位(CFU-GM)、可溶性黏附因子1(sICAM-1)的影响[5-8]

1.4.2.1小鼠骨髓CFU-GM的检测

小鼠分组、模型制备及给药同上。培养体系为含20%马血清的M199培养液3.5mL,5块0.3mm3小鼠肺组织生成的细胞刺激因子,适量青、链霉素(浓度100U/mL、100μg/mL),分别加入以上各组,各时间点小鼠的骨髓单个核细胞(终浓度为2×105),置于37℃水浴15min,加入琼脂0.3mL(终浓度为0.3%),再放入2.7%的甲基纤维素(终浓度为0.9%),振荡混匀后浇入培养皿,移入含5%CO2培养箱,37℃培养7d,用倒置显微镜计数各组生成的细胞集落,≥50个细胞组成的细胞团为1个细胞集落。

1.4.2.2小鼠血清sICAM-1的检测

末次给药后,小鼠眼眶静脉窦取血0.5mL,室温放置20min,以3000r/min离心20min,取血清5μL,按试剂盒说明书操作,检测血清中sICAM-1浓度值。

1.5统计学方法

所有数据均经SPSS15.0统计学软件进行处理,计量资料用(图示±S)表示,采用t检验,P<0.05表示差异有统计学意义。

2.结果

2.1各组小鼠外周血象和BMNC比较

模型对照组小鼠外周血中HGB、RBC、WBC和PLT数量明显减少,BMNC数明显降低,与正常对照组比较,差异均有统计学意义(P<0.05)。司坦唑醇片组和黄鼬干粉胶囊高、低剂量组小鼠外周血中HGB、RBC、WBC和PLT数量以及BMNC数量明显增加,与模型对照组比较,差异有统计学意义(P<0.05)。见表1。(https://www.daowen.com)

正常对照组骨髓增生活跃,全片有核细胞密布,巨核细胞多见。模型对照组骨髓增生极度低下,造血细胞明显减少,大量脂肪细胞代替造血细胞,间质水肿,巨核细胞未见。黄鼬干粉胶囊高、低剂量组及司坦唑醇片组仍显示骨髓增生低下,但可见散在造血灶,偶见巨核细胞。见图1。

表1 各组小鼠外周血象和BMNC比较

图示

注:与正常对照组比较,##P<0.01;与模型对照组比较,*P<0.05,**P<0.01。

图示

图示

图1 各组小鼠骨髓组织病理学表现(40×)

2.2各组小鼠骨髓CFU-GM、血清SICAM-1比较

采用X射线+环磷酰胺+氯霉素复合方法复制小鼠AA模型,模型对照组小鼠骨髓CFU-GM生成量明显降低,血清中SICAM-1明显升高,与正常对照组比较,差异均有统计学意义(P<0.05)。司坦唑醇片组和黄鼬干粉胶囊高、低剂量组均能提高模型小鼠骨髓CFU-GM生成量,降低小鼠血清中SICAM-1含量,与模型对照组相比,差异有统计学意义(P<0.05)。见表2。

表2 各组CFU-GM、SICAM-1比较(骨髓细胞数4×105)

图示

注:与正常对照组比较,##P<0.01;与模型对照组比较,*P<0.05,**P<0.01。

3.讨论

AA是一组由化学、物理、生物及自身免疫等因素所致的骨髓造血干细胞和(或)造血微环境损伤而出现的造血功能衰竭性疾病。其主要的病理改变是红骨髓向心性萎缩,被脂肪髓代替,无恶性细胞及网状纤维增生,以致外周血液中全血细胞减少,出现贫血、出血、感染等临床症状[9-10]。AA属于中医“髓劳病”范畴[11]。《本草纲目》记载,黄鼬的肉甘、温,有小毒,入肺、肾二经,具有杀虫疗疮、温肾缩尿的功效,治疥疮、疮溃不愈合、尿频等症。甘肃陇东地区民间AA及AL化疗后骨髓抑制的患者大多服用黄鼬干粉[12-13],但相关实验研究尚未见报道。本实验研究表明,采用X射线+环磷酰胺+氯霉素复合方法复制小鼠AA模型,黄鼬干粉胶囊能明显增加模型小鼠外周血中HGB、RBC、WBC和PLT数量,能增加骨髓BMNC和CFU-GM数量,降低血清SICAM-1水平。骨髓组织病理学结果表明,黄鼬干粉胶囊能明显改善模型小鼠骨髓增生低下和造血灶减少,促进骨髓造血。其治疗AA的作用机制可能与调节骨髓CFU-GM和血清sICAM-1的平衡有关。本研究为中医临床使用黄鼬干粉胶囊治疗AA和进一步新药研发提供了药理学实验依据。

参考文献

[1]林崇德,徐仁声.中国小学教学百科全书·自然卷[M].沈阳:沈阳出版社,1993:6.[2]孙纪元,王四旺.再生障碍性贫血的动物模型实验研究[J].中国实验动物学,2000,10(14):210-212.

[3]陈文杰,陈辉树.造血系统疾病临床病理学[M].北京:北京医科大学中国协和医科大学联合出版社,1997:145-149.

[4]任美华,翟声平.参附注射液治疗再生障碍性贫血模型小鼠的实验研究[J].中国现代药物应用,2013,7(14):35-36.

[5]唐佩弦.造血细胞培养技术[M].西安:陕西科学技术出版社,1985:103-106.

[6]章梅,张仲海,夏天,等.四君子汤对脾虚患者血清SICAM-1水平和单核细胞功能的影响[J].中国中西医结合,1999,19(5):271.

[7]林海燕,于佳宁.升白汤对化疗小鼠白细胞减少症的影响[J].中国中医基础医学,2010,16(11):1003-1005.

[8]张舜玲,刘瑞玉,许先吟,等.再生障碍性贫血患者血清SICAM-1和TGF-B1水平及其意义[J].现代临床医学生物工程学,2003,9(1):15-17.

[9]邓家栋,杨崇礼,杨天楹,等.临床血液病学[M].上海:上海科学技术出版社,2001:462-489.

[10]印会河,张伯讷.中医基础理论[M].上海:上海科学技术出版社,1985:39-58.

[11]李时珍.本草纲目[M].上海:上海科学技术出版社,2008:128.

[12]廖挺,刘则鹏,张丽娜.廖志峰应用健脾补肾活血汤治疗慢性再生障碍性贫血临床观察[J].西部中医药,2014,27(11):53-55.

[13]展锐,黄邦荣,王兰英.兰州方对再生障碍性贫血模型小鼠外周血细胞的影响[J].西部中医药,2014,27(9):10-12.

(刊登于《西部中医药》2016年第29卷第2期,姚金华、夏小军、马骏、杜志荣 等作)