变异菌株和野生型菌株的纤维素酶活力比较
1）固体曲
在稻草粉固体培养基上，与野生菌株比较，EA3-867，尤其是N2-78的菌丝生长差，孢子形成慢而少。比较不同菌株在稻草粉麸皮固体培养基上生长3天的酶活力表明（见表2），变异株比野生型菌株，无论是CMC酶解活力，滤纸酶解活力、棉花糖化活力均有不同程度的提高，其中以CMC酶解活力增加最多（2～3倍），其次是滤纸酶解活力（震荡法，1倍多），静止法测定的滤纸糖和棉花糖增加量较少；可溶性蛋白质略有增加。从两株野生型菌株来看，木-3的CMC活力低于AS 3.3002，但滤纸活力和棉花糖均高于AS 3.3002，可能暗示木-3的C1酶活力高于AS 3.3002，两株变异菌株中，N2-78的纤维素酶对各种底物的酶解活力和可溶性蛋白质含量都比EA3-867的要高。
图1 菌落形态（在合成琼脂平板上30℃培养4天）
（a）AS3.3002；（b）EA3-867；（c）木-3；（d）N2-78
图2 孢子及菌丝的电子显微镜照片
（a）AS3.3002的孢子及菌丝形态（4800×）；（b）EA3-867的孢子形态（4800×）；（c）木-3的孢子形态（4 800×）；（d）N2-78的孢子形态（4 800×）
表1 AS 3.3002、EA3-867、木-3和N2-78的形态比较*
*培养在马铃薯、葡萄糖琼脂平板培养基上。
表2 四株菌的固体曲纤维素酶活力比较*
*培养基：见正文。
**滤纸膨胀软化为+；滤纸破碎断裂，但仍成形为++；滤纸完全崩溃，呈糊状为+++。⊥代表滤纸崩溃程度比“+”差。
2）液体曲（摇瓶）
四株菌株震荡培养60小时，培养滤液在外观上有明显的差异，AS 3.3002呈淡黄色，木-3呈灰绿色，EA3-867呈黄色，N2-78呈清澈透明的亮黄色。在培养过程中，菌丝均结成小球，但结球形状、大小、结构都有不同。AS 3.3002、木-3和EA3-867的菌丝成球较大而松散，有时聚成条状或块状，但N2-78菌丝成球，小而紧密，成鱼籽状。
四株菌株的纤维素酶活力有明显差异。AS3.3002和木-3经诱变后，纤维素酶对各种底物的酶解活力都大幅度增长（见表3）。其中以N2-78的活力最高。液体曲与固体曲相比，野生型菌株各项纤维素酶活力都低于固体曲酶液的活力，而变异株均明显高于固体曲酶液的活力，故变异株在液体培养中活力提高倍数均比固体培养物中高得多。摇瓶中N2-78生长60小时，与同样培养的木-3相比，CMC活力，滤纸糖（震荡法）增加10多倍；滤纸糖（静止法）和棉花糖也分别增加了7倍多和6倍。本液体培养条件可能更适合这二株变异株（尤其是N2-78）产生纤维素酶。此外，在培养滤液中还测定得到较高的果胶酶、半纤维素酶，一定的淀粉酶活力，以及少量的蛋白酶活力。果胶酶活力在变异株中也有所提高，其余几种酶都略有减少。
3）酶制剂(https://www.daowen.com)
生长3天的固体曲制成丙酮粉。各种酶活力测定的结果列于表4。变异菌株中纤维素酶活力增加的情况基本上同固体曲类似。CMC糖化力、CMC液化力，滤纸糖（震荡法）增加较多，滤纸糖（静止法）和棉花糖增加较少。由四株菌制成的酶制剂中，N2-78各项纤维素酶活力仍为最高。
诱变后，除纤维素酶活力显著提高外，可溶性蛋白、果胶酶和半纤维素酶也有一定增加，但淀粉酶和蛋白酶，同液体曲一样，由变异株制成的酶制剂中，活力都减低。
由变异株制成的固体曲、液体曲和酶制剂中，各种酶活力与原始菌株比较如表5所示。
由EA3-867和N2-78菌株制成的固体曲酶制剂与Onozuka R-10纤维素酶制剂，在相同条件下进行各种活力比较，结果如表6所示。除果胶酶活力外，其他纤维素酶活力，由EA3-867和N2-78菌株制成的固体曲酶制剂均高于Onozuka R-10。
