血液原虫的检查技术

更新于 2026年10月10日 版权声明
一、血液原虫的检查技术

寄生在牛羊血液中的原虫如巴贝斯虫、泰勒虫、伊氏锥虫等,会大量破坏红细胞,使病畜出现高热稽留。实验室诊断时,一般在病畜高温时采取家畜血液,进行血液虫体的检查。常用的检查方法主要有血涂片染色观察、鲜血压滴的观察和虫体浓集法3种。

1.血涂片染色观察

病畜耳静脉采血、涂片,用姬姆萨或瑞氏染液染色后观察。

(1)血片的制作 消毒针头刺耳尖采集血液。取2片干燥洁净的载玻片,一为载片,一为推片。左手持一载片两端,右手持推片;取被检血1滴(注意:直接涂片时第1滴血不要)滴于载片一端,推片一端与血接触呈45°角,并使其血液自由沿推片边缘扩散,待均匀后,后拉推片3~5毫米,再以同等速度轻轻向载片另一端推动,将血均匀地涂抹在载片上,如图1-20所示。让血片自然干燥、待染,良好的血片以薄而均匀为宜,如图1-21所示。

图示

图1-20 血片制作方法

图示

图1-21 血片的比较

(2)固定 将已干燥的血片浸入甲醇中2~3分钟,取出晾干;或者在血片上滴加数滴甲醇使其作用2~3分钟,再自然挥发干燥。

注意

用姬姆萨染色法时血片要进行固定,而瑞氏染色法不用固定血片。

(3)染色

1)姬姆萨染色法。取已固定的血片,置于染色缸的染色架上,滴加姬姆萨染液至盖满整个血膜(约2毫升),根据室温高低和血片厚度,染色10~30分钟,用蒸馏水冲洗、干燥、镜检。

2)瑞氏染色法。取干燥血液涂片,置于染色缸的染色架上,滴加瑞氏染液于血片上,染液的量以刚覆盖血膜为宜。也可将血液涂片的血膜向下,滴加染液时由载玻片边缘浸入,以覆盖血膜(此法可避免颗粒状物沉于血膜上,而影响计数)。待染5~8分钟,再加等量的缓冲液,并轻轻摇动,使染液和缓冲液混匀。继续染色3~5分钟,再用蒸馏水冲洗,干燥后即可镜检。

(4)镜检 将血液涂片置于显微镜载物台上,用高倍镜观察,见红细胞变形、破裂,内有环形和卵圆形虫体(环形泰勒虫,见图1-22),或红细胞内有杆状和梨籽形虫体(瑟氏泰勒虫,见图1-23),或红细胞内有1个圆形虫体(山羊泰勒虫,见图1-24),或红细胞内有1~3个成双的梨籽形以尖端相连的呈锐角或钝角的虫体(双芽巴贝氏虫,见图1-25),即可确诊。

图示

图1-22 血液中的环形泰勒虫

图示

图1-23 血液中的瑟氏泰勒虫

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图1-24 血液中的山羊泰勒虫(https://www.daowen.com)

图示

图1-25 血液中的双芽巴贝氏虫

(5)注意事项

1)载玻片必须清洁干燥,最好用硫酸—重铬酸钾溶液浸泡洗净后,烘干备用。冬季或寒冷情况下,宜将载玻片烘热到40℃左右,干燥速度快,血细胞变形小,若不能立即检验,可用数滴甲醇加以固定。

2)姬姆萨染液的配制:姬姆萨染色粉0.5克、纯甘油(中性)33.0毫升、纯甲醇(中性)33.0毫升。

先将姬姆萨染色粉加入甘油内,置水浴(56~60℃)加温2小时,使染色粉溶解;再加入甲醇,混匀,保存于棕色瓶中。1周后,用滤纸滤过即成原液。

注意

姬姆萨原液中应绝对避免混入水分。

临用时,以清洁、干燥吸管吸取原液1毫升,加于蒸馏水10毫升中;或吸取原液1~2滴,加于蒸馏水1毫升中,配制成应用液使用。

3)本法所染血片,虫体呈蓝青色,组织细胞细胞质呈红色,细胞核呈蓝色,清晰鲜艳,各种白细胞易于辨别并适于血液原虫的检查。

染色良好的血片呈玫瑰红色。若呈灰色及青灰色,表示染色液过碱;呈鲜红色,则表示染色液过酸或染色时间过短。

2.鲜血压滴观察

主要是检查血液中虫体的运动性。将1滴生理盐水置于洁净的载玻片上,滴被检血液1滴充分与之混合后,盖上盖玻片,静置片刻,放显微镜下用低倍镜检查,发现有可疑虫体运动时,可再换高倍镜检查。由于虫体未染色,检查时应使视野中光线弱些。

提示

鲜血压滴观察仅适用于锥虫、微丝蚴的检查。

3.虫体浓集法

采病畜抗凝血6~7毫升,以500转/分钟离心5分钟,使其中大部分红细胞沉降;而后将含有少量红细胞、白细胞和虫体的上层血浆移入另一离心管中,补加一些生理盐水,再以2500转/分钟离心10分钟;弃去上清,取沉淀物制成抹片,按上述染色法染色检查。

提示

虫体浓集法适用于伊氏锥虫、梨形虫和微丝蚴等的检查。

血液中微丝蚴的检查方法是采血于离心管中,加入5%醋酸溶液以使血液细胞溶解,待溶血完成后,离心并吸取沉淀物检查。

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