小鼠皮瓣动物模型
（一）小鼠皮肤营养血管
常用于小鼠皮瓣模型的营养血管主要是鼠体穿支和鼠耳血管束。
鼠体穿支：主要有4对（其中背侧2对、腹侧2对）。从头至尾，背侧为胸背动脉穿支和髂腰动脉穿支，腹侧为胸外侧动脉穿支和腹部动脉穿支（图1-5-5）。血管体间均有丰富吻合。
图1-5-2 跨区供血皮瓣动物模型
A.皮瓣设计；B.模型制备；C.皮瓣原位缝合；D.皮窗安装；E.choke血管形态学观测；F.采集图像
图1-5-3 静脉超引流与动脉增压皮瓣动物模型
A.皮瓣设计；B.模型制备（B1，实验A组；B2，实验B组；B3，对照组）；C.皮瓣原位缝合；D.术后7天不同组皮瓣存活情况（D1，实验A组；D2，实验B组；D3，对照组）
图1-5-4 蒂部扭转与张力皮瓣动物模型
A.皮瓣设计（P，穿支皮瓣血管蒂；S，皮肤切除；X，剑突）；B.皮瓣切取；C.皮瓣相互移位；D.皮瓣缝合；E.术后5天不同组皮瓣存活情况（E1，对照组；E2，扭转组；E3，张力组；E4，扭转张力组）
图1-5-5 小鼠皮肤营养血管
A.鼠体背侧血管；B.鼠体腹侧血管
1.胸背动脉穿支；2.髂腰动脉穿支；3.胸外侧动脉；4.腹壁下动脉
图1-5-6 小鼠耳廓的血管分布(https://www.daowen.com)
A.耳廓实例；B.摊平放大（1.头侧血管束；2.中间血管束；3.尾侧血管束）
小鼠耳廓的血管：自前向后可见头侧、中间及尾侧3条血管束。血管束间形成丰富的吻合。头侧血管体与尾侧血管体分别约供应1/4的耳体，中间血管体约供应1/2的耳体（图1-5-6）。
（二）随意皮瓣
小鼠随意皮瓣模型由黄谢梅（2011）建立并报道，用于研究随意皮瓣的成活机制。
小鼠麻醉后，背部脱毛消毒，建立颅端蒂舌形随意皮瓣（图1-5-7）。颅缘为第7胸椎，尾缘为腰椎与骶骨连接处，两侧缘为中线旁开0.5 cm。面积约3.0 cm×1.0 cm。切开皮瓣尾缘和侧缘，深筋膜下掀起皮瓣至颅侧缘，硅胶膜覆盖创面并原位缝合，切口周围消毒，术后分笼饲养。术前和术后第1、3、5、7天采用散斑血流成像仪检测皮瓣不同区域血流变化，术后7天评估皮瓣存活率。
（三）跨区皮瓣中央choke区微循环重构动物模型
图1-5-7 小鼠随意皮瓣
A.皮瓣设计；B.皮瓣切取；C.术后7天皮瓣外形
图1-5-8 跨区皮瓣多血管体间微循环重构动物模型
A.皮瓣设计；B.对照组；C.实验A组；D.实验B组；E.实验C组；F.皮瓣原位缝合
跨区皮瓣中央choke区微循环重构动物模型，由李红（2016）建立并报道，用于探讨多血管体间choke区灌注量变化及其对血管形态学的影响。
选健康小鼠，分成1个正常组和3个实验组（A、B、C）。小鼠麻醉后，脱毛、消毒。设计小鼠背部包括2个胸背穿支体区和2个髂腰穿支体区的跨区皮瓣，它们在皮瓣中央形成网状吻合区，即中央choke区（图1-5-8）。皮瓣范围：头侧水平线为肩胛下角处，尾侧水平线为髂后上棘处，左右侧背部中线各旁开1.5 cm。皮瓣大小约5 cm×3 cm。切开皮瓣外周，钝性分离皮肤和皮下组织。构建4种类型皮瓣：①对照组，保留4条穿支，不做结扎。②实验A组，结扎右侧胸背穿支，保留其余3条穿支。③实验B组，结扎右侧2条穿支，保留左侧2条穿支。④实验C组，只保留左侧胸背穿支，其余3条穿支均予以结扎。皮瓣原位缝合，单独饲养。术前及术后6小时、1天、3天、5天、7天，用激光多普勒血流仪连续监测中央choke区血流量，术后7天观察皮瓣内血管形态学特点，HE染色对目的蛋白表达进行检测及定位。
（四）跨区供血耳瓣动物模型
跨区供血耳瓣动物模型由梁成（2014）建立并报道，探讨跨区皮瓣微循环的形态学变化。
选用鼠耳完整无皮肤病变或外伤的ICR小鼠，麻醉成功后，商业人用脱毛膏鼠耳脱毛并用流水冲净，用眼科剪从尾侧向头侧剪断小鼠耳基底部尾侧2/3，保留头侧1/3，形成以耳前动静脉为蒂内含3个血管体、2个choke区的跨区供血耳瓣（图1-5-9）。侧卧置于图像采集系统的动物承载台上，调节体视显微镜物镜并固定，设置承载台在X、Y轴上步进距离和间隔时间，弓形路线渐次、局部采集造模后所需时间点图像，合成鼠耳全景图。重点观察皮瓣的坏死率、皮瓣内choke血管的形态学变化。