3 标本制作
（1）徒手切片。
就是将实验材料采集来后用水洗干净。在切片时，用左手的拇指、食指和中指夹住材料。在夹材料时切勿太紧，也不要太松。右手用拇指与食指钳夹双面刀或单面刀（或其他刀）（如图15-1）。切片时刀片与材料切口基本上保持平行，刀片从左前方向右后方切。切片时刀口应用水湿润一下，以免切片干燥变形，同时也利于切片。每切一材料，要连续切几片，切片尽量切得薄一些，做组织化学用的切片厚度也不要超过40微米。切好的材料放在装有清水的培养皿中，观察时，从切片中选取最薄的片子。有些植物或植物的某些部分（如叶片、子房等）无法按上所述方法进行切片，可用马铃薯、甘薯或萝卜等切成长条小块，然后将小块切成两半作支持物，将材料放入切口后，将两半合起来再切。切好的片子剔除支持物后放在装水的培养皿中。切片用的刀一定要锋利，因此，要经常磨，用完后最好把刀片擦干，以防生锈，长久不用时要涂上凡士林防锈。
（2）临时装片。
装片前应将盖玻片、载玻片用纱布擦干净。盖玻片很薄易破，要特别小心，擦时左手用拇指和食指夹住盖玻片的两边或两角，右手用干净的纱布放在盖玻片的上下两个面，并用右手拇指与食指放在盖玻片的上下两个面，钳住纱布，用力均匀地擦。装片时，先在近载玻片的中央滴上一滴清水，将观察材料（如徒手切片等），用镊子钳住放在水滴上，然后用镊子钳住盖玻片的一侧或用拇指和食指拿着盖玻片的两角，沿水滴的边缘将盖玻片一边先放下，然后整个盖玻片轻轻地向下放（如图15-2），切忌要一下放下去，尽量减少气泡的产生，以免影响观察。水应充满整个盖玻片下面的面积，假如水太少，可用吸管在盖玻片的一侧将水加进去，另一侧用吸水纸，将水吸过去，使盖玻片下部有水。假如水分太多，材料易浮动，影响观察可用吸水纸在盖玻片的一侧吸去多余的水分。使盖玻片下的材料全浸没在水中又紧贴于盖玻片之下，而不被水所浮动。做好临时装片后，片子上仍然要保持干净。因为盖玻片下的水分容易蒸发，所以长时间的观察必须从盖玻片一侧不断地用吸管加水，特别是气温高、天气干燥的季节尤其要注意加水，或用熔化后的石蜡涂在盖玻片与载玻片接触的四周，防止水分蒸发。片子装好后贴上标签，注明材料名称、制作时间等，便可在显微镜下观察。
（3）几种显示细胞构造及内含物的染色方法。
淀粉粒：细胞中淀粉粒呈颗粒状存在于细胞质，把马铃薯块茎切成薄片，或用刀片在马铃薯块茎的切面上轻轻地刮几下，放在载玻片寸上滴上一滴碘化钾—碘液。此液不宜过浓，最好再冲淡了几倍至10倍。几分钟后，就可观察到有单粒和半复粒淀粉，复粒淀粉甚少。淀粉被染成淡蓝色，并能清楚地看到淀粉中心与昼夜沉积的轮纹。
蛋白质：将材料作徒手切片后，放在载玻片上，滴上一滴浓硝酸，含有酪氨酸的复合蛋白质变成鲜黄色，吸去部分硝酸而加入氨水，颜色由黄色急剧转变为棕黄色。或将切片放在碘—碘化钾的溶液中，含有蛋白质的细胞立即呈现黄色。用黄豆种子徒手切片，切好片子放在水中以除去液泡中所含的其他物质，然后滴上一滴碘——碘化钾溶液，蛋白质与淀粉同时染上色，但蛋白质部分被染成黄色，淀粉则被染成蓝色。
脂肪与油：用蓖麻和核桃等种子的种仁切成薄片，将切片放在苏丹Ⅲ—酒精—甘油液中浸24小时，取出用50％酒精洗涤，再放在甘油中用显微镜观察。染色慢时可微微加热，油脂类可染成淡黄或红色，假如油滴从细胞中游离出来，则看到一个个被染成淡黄或红色的圆形小滴。假如有硬脂酸或脂肪结晶时，染色将会十分缓慢，在这种情况下，只要稍稍加热，便可染上。苏丹Ⅲ溶液：0.2克苏丹Ⅲ溶于100毫升纯酒精中。加热，便成饱和溶液。
木质素：组成植物细胞壁的成分之一是木质素，常在木质化加厚的细胞壁中存在，如导管、管胞及纤维细胞。将小枝条作徒手切片，取最薄的切片放在载玻片上，先滴上一滴盐酸，再滴上一滴间苯三酚酒精溶液（间苯三酚在酸性条件下才能与木质素起作用）。木质化的细胞壁呈现樱红或紫红色（树胶也有同样的颜色反应）。
间苯三酚液：用0.1克间苯三酚溶于10毫升的95％酒精中。
果胶质：将徒手切片或洋葱鳞茎内表皮放在载玻片上，用0.02％的钌红水溶液染色半小时左右。或将材料放在上述钌红水溶液中染色半小时左右。取出后放在载玻片上，盖上盖玻片，用显微镜观察，可以看到细胞壁被染成淡红色的部分。但细胞中含氮物质，染色体、细胞核均能被钌红所染色。钌红水溶液要放在暗处，瓶子要洗涤得很干净，否则，钌红很快被还原沉淀。
纤维素：纤维素是植物细胞壁的主要成分。用幼嫩的枝条作徒手切片，或用洋葱鳞茎内表皮装片，将切片（或鳞茎内表皮）放在载玻片上，滴上一滴1％碘液，然后加上一滴66.5％硫酸（7份浓硫酸加3份蒸馏水）。稍等片刻，纤维素的细胞壁便呈现蓝色。
1％碘液：将1.5克碘化钾溶于100毫升的蒸馏水，待全溶解后，加入1克碘搅拌溶解。