常见样本准备

1.原则

（1）每组至少6个样品重复，标识要清晰，防止样品错乱；临床样本一般建议30例以上。

（2）生物体内代谢处于动态过程中，取样时要进行液氮淬灭，以保持样品在实验结束时的代谢水平，样品要提前进行分装，以保证后期解冻次数尽量少。

（3）整个运输和保藏均需要严格低温，尽可能降低样品在运输储藏过程中发生代谢变化，保证结果的真实性。

2.具体要求

（1）组织样本：选取干净的目标部位组织，取材均一。用无尘吸水纸快速吸去残留的体液，将组织剪切成边长0.5 cm 小块或100 mg左右小块，精确称量后将组织块在盛有液氮的锡纸槽中速冻，再装入液氮预冷的螺口冻存管中，迅速进行液氮速冻5 min以上，转移至-80℃冰箱冻存。(https://www.daowen.com)

（2）血清：收集全血至真空采血管（如BD的红头真空采血管），动物血清可用10～15 ml离心管收集，静置30～45 min，4℃，≤1 300 g（根据物种稍微进行调整）离心10 min。移液器将上层血清转移到1.5 ml离心管内（防止溶血），每管不低于100μl（精确量取），-80℃保存。

（3）血浆：使用含抗凝剂的采血管（如BD EDTA 血常规管），轻柔地上下颠倒混匀，持续8～10次，以混匀血液和抗凝剂，然后4℃，≤1 300 g（根据物种稍微进行调整）离心10 min。移液器将上层血浆转移到1.5 ml离心管内（防止溶血），每管不低于100μl（精确量取），-80℃保存。

（4）尿液：晨起中段新鲜尿液（临床样本）或代谢笼24 h新鲜尿液（动物样本）直接分装到离心管中，收集后立即4℃，400～1 000 g离心10～15 min，去除细胞和杂质，收集上清液。再10 000～15 000 g，于4℃离心10 min后，吸取中层澄清的尿液，用1.5 ml离心管分装，每管1 ml（精确量取），-80℃冷冻样品。

（5）粪便样本：根据实验收集消化系统不同位置的粪便，如肠道内容物或排出粪便，精确称量后等量分装，不得固液混合，液氮速冻后保存至-80℃。

随着系统生物学的发展对各层次的组学有了更新更高的要求，现在一个发展趋势是多层组学整合分析，即是指对来自不同组学的数据源进行归一化处理、比较分析，建立不同组间数据的关系，综合多组学数据对生物过程从基因、转录、蛋白质和代谢水平进行全面的深入的阐释，从而更好地对生物系统进行全面了解。另外，随着精准医疗的发展，个体化的各组学的检测也提高到了疾病诊断和治疗指导的高度。